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酵母雙雜交(Yeast two hybrid)
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技術(shù)待認(rèn)領(lǐng)

技術(shù)概述

蛋白的酵母雙雜交實驗是以酵母的遺傳分析為基礎(chǔ),研究蛋白間相互作用的一種有效技術(shù)手段。轉(zhuǎn)錄活化蛋白可以和DNA 上特異的序列結(jié)合而啟動相應(yīng)基因的轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。這種DNA 結(jié)合與轉(zhuǎn)錄激活的功能是由其上兩個相互獨立的結(jié)構(gòu)域,即DNA 結(jié)合結(jié)構(gòu)域(Binding Domain, BD)和轉(zhuǎn)錄活化結(jié)構(gòu)域(Activation Domain, AD)共同完成的。

以Gal4 系統(tǒng)為例,BD和AD 分別由Gal4 蛋白上不同的兩個結(jié)構(gòu)域(1-147aa 與768-881aa)構(gòu)成。在利用GAL4 系統(tǒng)篩選cDNA 文庫或研究蛋白間的相互作用時,DNA 結(jié)合結(jié)構(gòu)域與靶蛋白即”誘餌”相結(jié)合,轉(zhuǎn)錄活化結(jié)構(gòu)域與文庫蛋白或要驗證的蛋白相結(jié)合。一般情況下,單獨的BD 可以與GAL4 上游活化序列(GAL UAS)結(jié)合但不能引起轉(zhuǎn)錄,單獨的AD 則不能與GAL UAS 結(jié)合;只有當(dāng)BD 與 AD 分別表達(dá)的融合蛋白由于相互作用而導(dǎo)致兩者在空間上相互靠近時,BD 與AD 才能與 GAL UAS結(jié)合并且引起報道基因的轉(zhuǎn)錄,從而激活下游報告基因,通過這一系列實驗來驗證兩個蛋白之間的相互作用。

(資料來源:酵母雙雜實驗原理及技術(shù):馥郁小鎮(zhèn)、鐘鼎生物)

技術(shù)詳情

酵母雙雜交系統(tǒng)是一種基于真核生物轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制發(fā)展起來的蛋白質(zhì)相互作用檢測技術(shù),由Fields和Song在1989年首次提出。該技術(shù)基于真核細(xì)胞中轉(zhuǎn)錄因子(如GAL4)的結(jié)構(gòu)和功能特點。GAL4有兩個互不干擾的結(jié)構(gòu)域,兩個結(jié)構(gòu)域在分開時會行駛它們各自的功能,DNA結(jié)合域(DNA Binding Domain,BD)具有DNA的結(jié)合功能,轉(zhuǎn)錄活化結(jié)構(gòu)域(Activation Domain,AD)有激活轉(zhuǎn)錄的功能,將兩者連在一起會具有轉(zhuǎn)錄活性。將待研究的兩種蛋白分別與GAL4的BD和AD融合表達(dá),能夠形成兩種融合蛋白。當(dāng)這兩種蛋白同時轉(zhuǎn)入酵母細(xì)胞后,能夠在酵母細(xì)胞內(nèi)發(fā)生相互作用時,會促使BD與AD在空間上接近,進(jìn)而激活特定的報告基因,如LacZ、HIS3等,如果兩種蛋白沒有發(fā)生相互作用,報告基因就不會表達(dá)。通過檢測報告基因的是否表達(dá),可以間接判斷兩種蛋白之間是否存在相互作用。

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膜系統(tǒng)

泛素(ubiquitin)分子量很小,由76aa殘基組成,作為信號分子參與到生物泛素化修飾過程,其連接另外一種蛋白質(zhì)的N端,然后被泛素專一性蛋白酶(UBPs)識別,從而導(dǎo)致與泛素相連的蛋白降解。泛素可以分成兩部分:N端(Nub),C端(Cub)。將泛素Nub的13位異亮氨酸突變?yōu)楦拾彼幔∟ubI突變?yōu)镹ubG),避免了Cub和Nub自我結(jié)合或接近。將Cub與LexA-VP16轉(zhuǎn)錄激活因子融合成一個融合蛋白Cub-LexA-VP16。正常條件下NubG不與Cub結(jié)合,UBPs不能識別分離的泛素,轉(zhuǎn)錄激活因子不會被切下來。最后,將要檢測的兩種蛋白分別與NubG和Cub融合,。當(dāng)這兩種蛋白同時轉(zhuǎn)入酵母細(xì)胞后,能夠在酵母細(xì)胞內(nèi)發(fā)生相互作用時,會促使NubG和Cub的相互接近,被UBPs識別,導(dǎo)致LexA-VP16的解離,進(jìn)入核內(nèi),從而激活報告基因的轉(zhuǎn)錄。

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典型的實驗步驟包括載體構(gòu)建(如pGADT7-AD和pGBKT7-BD)、酵母轉(zhuǎn)化以及在四缺培養(yǎng)基上進(jìn)行篩選等。酵母雙雜交技術(shù)已被廣泛用于檢測弱相互作用、解析蛋白質(zhì)互作結(jié)構(gòu)域以及篩選新的互作蛋白,成為蛋白質(zhì)功能研究中的重要工具。

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泛素(ubiquitin)分子量很小,由76aa殘基組成,作為信號分子參與到生物泛素化修飾過程,其連接另外一種蛋白質(zhì)的N端,然后被泛素專一性蛋白酶(UBPs)識別,從而導(dǎo)致與泛素相連的蛋白降解。泛素可以分成兩部分:N端(Nub),C端(Cub)。將泛素Nub的13位異亮氨酸突變?yōu)楦拾彼幔∟ubI突變?yōu)镹ubG),避免了Cub和Nub自我結(jié)合或接近。將Cub與LexA-VP16轉(zhuǎn)錄激活因子融合成一個融合蛋白Cub-LexA-VP16。正常條件下NubG不與Cub結(jié)合,UBPs不能識別分離的泛素,轉(zhuǎn)錄激活因子不會被切下來。最后,將要檢測的兩種蛋白分別與NubG和Cub融合,。當(dāng)這兩種蛋白同時轉(zhuǎn)入酵母細(xì)胞后,能夠在酵母細(xì)胞內(nèi)發(fā)生相互作用時,會促使NubG和Cub的相互接近,被UBPs識別,導(dǎo)致LexA-VP16的解離,進(jìn)入核內(nèi),從而激活報告基因的轉(zhuǎn)錄。

典型的實驗步驟包括載體構(gòu)建(如pGADT7-AD和pGBKT7-BD)、酵母轉(zhuǎn)化以及在四缺培養(yǎng)基上進(jìn)行篩選等。酵母雙雜交技術(shù)已被廣泛用于檢測弱相互作用、解析蛋白質(zhì)互作結(jié)構(gòu)域以及篩選新的互作蛋白,成為蛋白質(zhì)功能研究中的重要工具。

酵母雙雜交系統(tǒng)的主要應(yīng)用,在于快速分析已知蛋白質(zhì)間的相互作用,以及篩選與已知蛋白互作的新配體及其編碼基因,已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)組學(xué)、細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)以及藥物篩選等多個領(lǐng)域。該技術(shù)具備多項顯著優(yōu)勢:

(1)其相互作用信號依賴于細(xì)胞內(nèi)重建的轉(zhuǎn)錄因子活性,無需繁瑣的蛋白質(zhì)純化步驟。

(2)檢測過程在活細(xì)胞中進(jìn)行,更能反映真實的細(xì)胞內(nèi)環(huán)境。

(3)檢測結(jié)果基于報告基因產(chǎn)物的累積,因此能捕捉微弱或瞬時的相互作用,靈敏度高。

該系統(tǒng)可利用來自不同組織、細(xì)胞類型或分化時期的cDNA文庫,廣泛適用于胞漿、胞核及膜蛋白等多種蛋白的功能研究。

載體構(gòu)建—制備感受態(tài)—轉(zhuǎn)化—點板—互作觀察

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評論:

1 條評論,訪客:1 條,官方:0 條
  1. 三十而立
    三十而立發(fā)布于: 

    如果手上有比較大量的純度比較高的蛋白質(zhì)的話??梢試L試用以下比較直接的方法:1. isothermal titration calorimetry (ITC),直接測定兩個蛋白互相作用的Kd值。2. AUC,也就是超速離心分析??梢灾苯訙y定兩個蛋白相互作用與否。3.SAXS, 也就是X-ray小角散亂。不過技術(shù)難度比較大一些。4. 溶液NMR,這個應(yīng)該可以但不太了解。5. 結(jié)晶再解構(gòu),這個不用解釋了。比較究極一點。6.cryo-EM,同上。比較究級的方法。7. 最簡單常用的,gel-filtration,觀察有沒有oligomer的分子量峰出現(xiàn)。但是相互作用弱的話很難觀測到。8.更簡單常用的nativePAGE,同上,相互作用弱則很難觀測到。9.用氨基架橋試劑共價連接,然后SDS-PAGE??纯从袥]有oligomer的帶。暫時想到這些,跨度比較大。

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